Мазок на дифтерию как подготовиться
Мазок на дифтерию как подготовиться
Микробиологическое исследование, позволяющее выявить возбудителя дифтерии (C. diphtheriae) в исследуемом биоматериале.
Посев на бациллы Леффлера, посев на BL, посев на дифтерийную палочку.
Corynebacterium diphtheriae сulture, Diphtheria сulture.
Какой биоматериал можно использовать для исследования?
Мазок из зева и носа.
Как правильно подготовиться к исследованию?
Общая информация об исследовании
Corynebacterium diphtheriae (бациллы Леффлера) – это грамположительные бактерии рода Corynebacterium, являющиеся возбудителями дифтерии и способные к выработке дифтерийного токсина. Заболевание передается воздушно-капельным путем, источником инфекции являются больные люди или бактерионосители.
Инкубационный период составляет в среднем 2-5 дней. Происходит фибринозное воспаление слизистых оболочек ротоглотки и дыхательных путей с формированием псевдомембран и с симптомами общей интоксикации.
При токсической форме дифтерии также может поражаться сердце и нервная система. В некоторых случаях возможно бессимптомное носительство.
Диагноз «дифтерия» основывается на клинических данных, посев на дифтерию проводится для подтверждения.
Для чего используется исследование?
Когда назначается исследование?
Что означают результаты?
Референсные значения: нет роста.
Выявление возбудителя дифтерии подтверждает диагноз «дифтерия» или, если симптомы заболевания отсутствуют, свидетельствует о бактерионосительстве. При отрицательном результате посева у больного с подозрением на дифтерию диагноз может быть подтвержден в том случае, когда у контактных лиц результат посева положительный, то есть выделяется возбудитель дифтерии.
Причины положительного результата
Причины отрицательного результата
Что может влиять на результат?
Диагноз «дифтерия» основывается на клинической картине заболевания, поэтому лечение должно быть начато до получения лабораторного подтверждения заболевания. При положительном результате посева необходимо исследовать выделенный штамм С. diphtheriae на токсигенность.
Кто назначает исследование?
Инфекционист, терапевт, врач общей практики, педиатр, ЛОР.
Подготовка к микробиологическим исследованиям
Правила подготовки к некоторым микробиологическим исследованиям включены в соответствующие разделы (исследования мочи, кала, спермы). Для всех микробиологических исследований рекомендуется прекращение применения антибактериальных препаратов за 7-10 дней до взятия материала.
Микробиологические исследования отделяемого половых органов
В течение 1 месяца перед исследованием пациенты не должны принимать антибиотики. У женщин взятие биологического материала лучше всего проводить не ранее чем через 5 дней после окончания менструации. Перед взятием материала пациентам рекомендуется воздержаться от мочеиспускания в течение 1,5-2 часов. При наличии гнойных выделений соскоб рекомендуется брать через 15-20 минут после мочеиспускания.
У мужчин исследование проводится утром до мочеиспускания, или пациентам рекомендуется не мочиться в течение 2-4 часов до взятия пробы.
Посев грудного молока
Перед сбором материала грудь помыть теплой водой с мылом, вытереть чистым полотенцем, тщательно обработать соски и околососковую область молочных желез ватным тампоном, смоченным 70% этиловым спиртом (каждая железа обрабатывается отдельным тампоном).
Первые 10-15 мл сцеженного молока для анализа не используются.
Последующие 3-4 мл молока собираются из каждой груди в отдельный стерильный контейнер (подписать — правая и левая). Материал доставить в лабораторное отделение в течение 2-х часов после сбора.
Сбор секрета предстательной железы на посев
Секрет простаты получают в процессе энергичного массажа предстательной железы врачом-урологом. Материал собирается в стерильный контейнер после туалета наружного отверстия мочеиспускательного канала теплой водой с мылом.
Исследование мазка из зева
Мазок из зева берется строго натощак, перед исследованием за 3 часа нельзя принимать пищу, чистить зубы, полоскать рот водой, пить. При проведении исследования на дифтерию берутся два мазка: из зева и носа.
Как подготовиться к сдаче мазка из горла и носа для проведения анализа
Мазок из зева — лабораторный анализ, в ходе которого исследуется состояние микрофлоры ротовой полости и носа. Исследование способствует выявлению инфекционной и вирусной патогенной микрофлоры, возбудителей различных заболеваний носоглотки. Результаты анализа помогают поставить точный диагноз, назначить эффективное лечение.
Бакпосев из носоглотки проводится в следующих случаях:
Бактериологический посев из зева может определить чувствительность к антибиотикам патогенной микрофлоры. Данные анализа нужны для назначения эффективного лечения.
Подготовка к сдаче анализа
Исследование микроорганизмов носоглотки покажет достоверный результат только при правильной сдаче биологического материала и подготовке пациента к забору биологического материала:
Отмена различных мазей для носа и растворов для полоскания полости рта и горла за несколько дней перед сдачей мазка необходима для того, чтобы исключить ложноотрицательный результат. Ведь данные средства будут на некоторый промежуток времени уничтожать микробы, поддерживая их количество на минимальном уровне, в результате чего они не будут обнаружены в мазке. Но поскольку в реальности микробы имеются на слизистой оболочке, то их необнаружение в мазке является ложноотрицательным результатом. Чтобы этого избежать, необходимо позволить бактериям в течение 2 – 3 дней свободно расти и размножаться на слизистых оболочках горла и носа без воздействия каких-либо антисептических средств.
Требование не чистить зубы, не пить и не принимать пищу в течение двух часов перед сдачей мазка из горла и носа обусловлено тем, что данные действия могут «смыть» часть бактерий, что также спровоцирует ложноотрицательный результат.
В связи с необходимостью воздержаться от пищи, питья и чистки зубов мазок лучше всего сдавать утром, натощак, не выпив даже стакан чая или чашку кофе после пробуждения. Данные простые мероприятия по подготовке к сдаче мазка из горла и носа обеспечат максимально информативный и правильный результат исследования.
Взятие мазка для проведения бактериологического анализа проводится в условиях лаборатории:
Процедура взятия мазка из горла не вызывает болезненных ощущений, но может спровоцировать рвотный рефлекс. Чтобы минимизировать процесс обратной перистальтики, человеку нужно правильно подготовиться к процедуре — ничего не есть и не пить.
Врач-бактериолог (заведующий лабораторным отделом) — Е.М.Ачкас
Читайте также
Телефон горячей линии работает в будние дни с 8.30 до 17.00 (обед с 12.00 до 13.00)
801716-7-45-57
Дифтерия
Дифтерию вызывают токсигенные штаммы Corynebacterium diphtheriae или палочки Леффлера, не токсигенные штаммы заболевания не вызывают. Дифтерийный токсин по своим свойствам относится к сильнодействующим ядам, уступая лишь ботулитическому и столбнячному. Под воздействием токсина нарушается синтез белков во внутренних органах больного, что приводит к структурным и функциональным нарушениям, демиелинизация нервных волокон – к параличам и парезам. Способность к токсинообразованию проявляют лишь лизогенные штаммы C.diphtheriae, инфицированные бактериофагом (р-фаг), несущим ген tox, кодирующий структуру токсина дифтерии. Передача бактериофагом гена tox нетоксигенным штаммам C.diphtheriae, обитающим в носоглотке и накопление их в популяции, может сопровождаться развитием вспышки дифтерии.
Наиболее таксономически близкими к виду C.diphtheriae являются C.ulcerans и C.рseudotuberculosis, природные патогены крупного и мелкого рогатого скота, лошадей. Кроме того, на слизистой ротоглотки и носа часто встречается палочка Гофмана (C.pseudodiphtheriticum), не обладающая патогенностью и токсигенностью для человека. Поэтому основной задачей лабораторной диагностики дифтерии является выявление токсигенных штаммов дифтерии и дифференцировка возбудителя дифтерии от других коринебактерий, нормальных обитателей носо- и ротоглотки. Все микроорганизмы рода Corynebacterium – грамположительные полиморфные палочки, не образующие спор, хорошо растущие в аэробных условиях при 37°С. При окраске метиленовым синим в клетках C.diphtheriae отмечается внутриклеточная исчерченность, что объясняется наличием зерен волютина. Окраска по Граму не используется из-за вариабельности окрашивания клеток. По форме колоний и некоторым биохимическим свойствам C.diphtheriae подразделяются на культурально-биохимические варианты – gravis, mitis, intermedius, однако все они обладают способностью вырабатывать дифтерийный токсин. Тяжесть течения заболевания не связана с биохимическим вариантом C.diphtheriae. Токсигенные штаммы дифтерии более чувствительны к антибиотикам, чем не токсигенные.
Показания к обследованию
Дифференциальная диагностика. Заболевания, сопровождающиеся тонзиллитом (инфекционный мононуклеоз, ангины стрептококковой, стафилококковой этиологии и др.).
При культуральных исследованиях возбудитель C.diphtheriae дифференцируется от других коринебактерий, в первую очередь C.pseudodiphtheriticum, C.ulcerans, C.pseudotuberculosis.
Материал для исследований
Этиологическая лабораторная диагностика включает посев клинического материала с изучением токсигенных свойств на среде для определения токсигенности и биохимической идентификацией возбудителя, обнаружение АГ (дифтерийного токсина), выявление специфических АТ к дифтерийному токсину, обнаружение специфического фрагмента гена tox.
Сравнительная характеристика методов лабораторной диагностики и особенности интерпретации их результатов. Микроскопические исследования выполняют только для идентификации выделенной культуры. Микроскопия биологического материала не проводится.
Для посева используют материал соответствующих локализаций. Изучение токсигенных свойств на среде для определения токсигенности выполняют при использовании метода встречной иммунодиффузии токсина и антитоксических АТ в плотной питательной среде. При отсутствии линий преципитации на среде для определения токсигенности через 48 ч инкубации культура признается не токсигенной. Для биохимической идентификации используется тест с цистиназой (среда Пизу), определение уреазной и сахаролитической (сахароза, глюкоза, крахмал) активности.
При посеве возбудитель C.diphtheriae дифференцируется от других коринебактерий, в первую очередь C.pseudodiphtheriticum, C.ulcerans, C.pseudotuberculosis. Для выявления дифтерийного токсина используют методы РНГА или ИФА. Это исследование не является обязательным в практических бактериологических лабораториях, однако может использоваться как дополнительное для выдачи предварительного ответа. Метод также позволяет определить относительное (условное) количественное содержание токсина в исследуемой пробе.
Для выявления специфических АТ используют методы РПГА и РНГА. Метод РПГА используется для изучения напряженности противодифтерийного иммунитета. Условно-защитным титром АТ принят титр 1:20.
У больных определение титра АТ к АГ дифтерийной палочки в сыворотке крови методом РНГА проводится в двух пробах крови, собранных в начале заболевания и через 7–10 дней. Нарастание титра АТ в 3–4 раза во второй сыворотке относительно первой свидетельствует о перенесенной инфекции. Исследование используется преимущественно для ретроспективной диагностики дифтерии.
Обнаружение гена токсигенности (tox) методом ПЦР – наиболее быстрый и надежный метод лабораторной диагностики, однако он не дает информацию о способности микроорганизма к экспрессии дифтерийного токсина. Описаны случаи нетоксигенных штаммов дифтерии, несущих в себе
Посев на дифтерию (Corynebacterium diphtheriae)
Микробиологическое исследование, позволяющее выявить возбудителя дифтерии (C. diphtheriae) в исследуемом биоматериале.
Посев на бациллы Леффлера, посев на BL, посев на дифтерийную палочку.
Corynebacterium diphtheriae сulture, Diphtheria сulture.
Какой биоматериал можно использовать для исследования?
Мазок из зева и носа.
Как правильно к исследованию?
Подготовки не требуется.
Общая информация об исследовании
Corynebacterium diphtheriae (бациллы Леффлера) – это грамположительные бактерии рода Corynebacterium, являющиеся возбудителями дифтерии и способные к выработке дифтерийного токсина. Заболевание передается воздушно-капельным путем, источником инфекции являются больные люди или бактерионосители.
Инкубационный период составляет в среднем 2-5 дней. Происходит фибринозное воспаление слизистых оболочек ротоглотки и дыхательных путей с формированием псевдомембран и с симптомами общей интоксикации.
При токсической форме дифтерии также может поражаться сердце и нервная система. В некоторых случаях возможно бессимптомное носительство.
Диагноз «дифтерия» основывается на клинических данных, посев на дифтерию проводится для подтверждения.
Для чего используется исследование?
Когда назначается исследование?
Что означают результаты?
Референсные значения: нет роста.
Выявление возбудителя дифтерии подтверждает диагноз «дифтерия» или, если симптомы заболевания отсутствуют, свидетельствует о бактерионосительстве. При отрицательном результате посева у больного с подозрением на дифтерию диагноз может быть подтвержден в том случае, когда у контактных лиц результат посева положительный, то есть выделяется возбудитель дифтерии.
Причины положительного результата
Причины отрицательного результата
Что может влиять на результат?
Предшествующая антибактериальная терапия.
Диагноз «дифтерия» основывается на клинической картине заболевания, поэтому лечение должно быть начато до получения лабораторного подтверждения заболевания. При положительном результате посева необходимо исследовать выделенный штамм С. diphtheriae на токсигенность.
Кто назначает исследование?
Инфекционист, терапевт, врач общей практики, педиатр, ЛОР.
Литература
Подписка на новости
Оставьте ваш E-mail и получайте новости, а также эксклюзивные предложения от лаборатории KDLmed